如GC-EI-MS教程中所述,Clumsid也可以用于分析低分辨率数据 - 尽管使用低分辨率数据是以成本为代价的。
在此示例中,我们将使用类似的样本(1ul铜绿假单胞菌PA14细胞提取物)如一般教程中,以相似的色谱法测量,但在不同的质谱仪中,Bruker Amazon Ion陷阱仪器以ESI-(+)模式运行,具有自动-MS/MS。除了引入低分辨率LC-MS/MS数据的工作流程外,该示例还证明了Clumsid可以与来自不同类型的质谱仪的数据一起工作。
我们从clumsiddata
包裹:
光谱的提取的工作方式与高分辨率LC-MS/MS数据相同:
就像在GC-EI-MS示例中一样,我们必须调整mz_tolerance
与高分辨率数据相比,价值要高得多,而保留时间公差可能保持不变。
我们看到我们的光谱数量与一般教程中的光谱相似,因为我们试图保留除质谱仪类型可比的所有参数。
从这个距离矩阵开始,我们可以使用所有数据探索功能clumsid
优惠。
现在,当我们制作MDS图时,我们了解到相似性数据与可比的高分辨率数据有很大不同:
为了更好地概述数据和一般相似性行为,我们创建了距离矩阵的热图:
我们清楚地看到,加热图通常比一般教程(由左上角的直方图支持的直觉)要多得多,即我们之间的光谱之间的相似性具有更高的一般性相似性。这并不奇怪,因为m/z信息的水平少于高分辨率数据,而不同总和公式的片段更可能具有无法区分的质量与充电比。
我们还看到可以识别一些或多或少的紧凑型簇。这在树状图可视化中更容易检查:
总之,Clumsid能够处理低分辨率LC-MS/MS数据,如果没有高分辨率数据,则在低分辨率数据中提供光谱相似性的概述可能非常有用,从而帮助代谢物注释,如果某些单独的代谢物如果某些单独的代谢物注释可以通过与真实标准进行比较来识别。但是,关于特征注释,应始终为其提供的许多好处而受到高分辨率方法。
SessionInfo()#> R版本4.2.0 RC(2022-04-21 R82226)#>平台:x86_64-pc-linux-gnu(64位)#>运行下:Ubuntu 20.04.4 LTS#>#>矩阵产品:默认#> blas:/home/biocbuild/bbs-3.16-bioc/r/lib/librblas.so#> lapack:/home/biocbuild/bbs-3.16-bioc/r/lib/librlapack.so#>#>语言环境:#> [1] lc_ctype = en_us.utf-8 lc_numeric = c#> [3] lc_time = en_gb lc_collate = c#> [5] lc_monetary = en_us.utf-8 lc_messages = en_us.utf-8#> [7] lc_paper = en_us.utf-8 lc_name = c#> [9] lc_address = c lc_telephone = c#> [11] lc_measurement = en_us.utf-8 lc_istentification = c#>#>附加的基本软件包:#> [1] Stats4 Stats图形GRDEVICES UTILS数据集方法#> [8]基础#>#>其他附件:#> [1] magrittr_2.0.3 metamsdata_1.31.0 metams_1.33.0#> [4] camera_1.53.0 xcms_3.19.0 msnbase_2.23.0#> [7] protgenerics_1.29.0 s4Vectors_0.35.0 mzr_2.31.0#> [10] rcpp_1.0.8.3 Biocparallel_1.31.0 Biobase_2.57.0#> [13] biocgenerics_0.43.0 clumsiddata_1.11.1.0 clumsid_1.13.0#>#>通过名称空间加载(并且未连接):#> [1] backports_1.4.4 HMISC_4.7-0#> [3] plyr_1.8.7 igraph_1.3.1#> [5] Lazyeval_0.2.2 Splines_4.2.0#> [7] genomeInfodB_1.33.0 ggplot2_3.3.5#> [9] digest_0.6.29 foreach_1.5.2#> [11] htmltools_0.5.2 fansi_1.0.3#> [13] checkmate_2.1.0 cluster_2.1.3#> [15] doparallel_1.0.17 tzdb_0.3.0#> [17] limma_3.53.0 readr_2.1.2#> [19] sna_2.6 matrixstats_0.62.0#> [21] vroom_1.5.7 msfeatures_1.5.0#> [23] jpeg_0.1-9 colorpace_2.0-3#> [25] xfun_0.30 dplyr_1.0.8#> [27] crayon_1.5.1 rcurl_1.98-1.6#> [29] jsonlite_1.8.0 Graph_1.75.0#> [31] Impute_1.71.0 Survival_3.3-1#> [33] iterators_1.0.14 APE_5.6-2#> [35] glue_1.6.2 gtable_0.3.0#> [37] zlibbioc_1.43.0 xvector_0.37.0#> [39] delaseDarray_0.23.0 deoptimr_1.0-11#> [41] scales_1.2.0 vsn_3.65.0#> [43] dbi_1.1.2 ggally_2.1.2#> [45] viridislite_0.4.0 htmltable_2.4.0#> [47] clue_0.3-60 bit_4.0.4#> [49] forefer_0.8-82 preprocesscore_1.59.0#> [51] Formula_1.2-4 Mscoreutils_1.9.0#> [53] htmlwidgets_1.5.4 httr_1.4.2#> [55] gplots_3.1.3 rcolorbrewer_1.1-3#> [57] Ellipsis_0.3.2 Farver_2.1.0#> [59] PKGCONFIG_2.0.3 RESHAPE_0.8.9#> [61] XML_3.99-0.9 NNET_7.3-17#> [63] SASS_0.4.1 UTF8_1.2.2#> [65] labeling_0.4.4 tidySelect_1.1.2#> [67] rlang_1.0.2 munsell_0.5.0#> [69]工具_4.2.0 cli_3.3.0#> [71] dbscan_1.1-10 generics_0.1.2#> [73] statnet.common_4.5.0 evaluate_0.15#> [75] stringr_1.4.0 fastmap_1.1.0#> [77] mzid_1.35.0 yaml_2.3.5#> [79] BIT64_4.0.5 KNITR_1.38#> [81] ROURUSTBASE_0.95-0 COTORS_1.18.2#> [83] purrr_0.3.4 rann_2.6.1#> [85] NCDF4_1.19 RBGL_1.73.0#> [87] NLME_3.1-157 Compiler_4.2.0#> [89] rstudioapi_0.13 Plotly_4.10.0#> [91] png_0.1-7 affyio_1.67.0#> [93] MassSpecWavelet_1.63.0 Tibble_3.1.6#> [95] BSLIB_0.3.1 Stringi_1.7.6#> [97] HighR_0.9 Lattice_0.20-45#> [99] matrix_1.4-1 vctrs_0.4.1#> [101] Pillar_1.7.0 LifeCycle_1.0.1#> [103] Biocmanager_1.30.17 jquerylib_0.1.4#> [105] maldiquant_1.21 data.table_1.14.2#> [107] BITOPS_1.0-7 GENOMICRANGES_1.49.0#> [109] R6_2.5.1 latticeExtra_0.6-29#> [111] pcamethods_1.89.0 affy_1.75.0#> [113] Network_1.17.1 Kernsmooth_2.23-20#> [115] gridextra_2.3 iranges_2.31.0#> [117] CODETOOLS_0.2-18 MASS_7.3-57#> [119] gtools_3.9.2 sustthat_0.2.1#> [121]摘要Experiment_1.27.0 GenomeInfodBdata_1.2.8#> [123] HMS_1.1.1 Parallel_4.2.0#> [125] grid_4.2.0 rpart_4.1.16#> [127] TIDYR_1.2.0 CODA_0.19-4#> [129] rmarkDown_2.14 matrixgenerics_1.9.0#> [131] base64enc_0.1-3